Study Programmes 2025-2026
WARNING : 2025-2026 version of the course specifications
BTGH2016-1  
Culture in-vitro, Culture in vitro et ses applications : micropropagation, assainissement, germplasm, biotechnologies
Duration :
48h Th
Number of credits :
Bachelier : agronome en techniques et gestion horticoles4
Lecturer :
Emilie Duchesne
Language(s) of instruction :
French language
Organisation and examination :
Teaching in the first semester, review in January
Units courses prerequisite and corequisite :
Prerequisite or corequisite units are presented within each program
Learning unit contents :
Le cours théorique (24h) aborde les fondements des techniques de culture in vitro. Une part importante du cours est consacrée aux méthodes et étapes de la micropropagation classique ainsi qu'à l'assainissement des clones via la culture de méristèmes éventuellement associée à des méthodes complémentaires.,

Les problèmes en relation avec les différentes étapes ainsi que les principales causes d'échecs sont également évoqués.

Les méthodes de multiplication avancées sont ensuite abordées (le principe de l'haplo-diploidisation, embryogenèse somatique).

Les différentes méthodes de multiplication sont comparées quant à la conformité génétique des plantes multipliées 'in vitro'. Quelques exemples particuliers sont ensuite étudiés ainsi que la problématique de la multiplication des chimères, nombreuses en horticulture.

Dans le cadre des travaux pratiques en laboratoire (24h), les points suivants sont étudiés et appliqués :

Les principes de la culture in vitro et la micropropagation des plantes horticoles :

. Le travail en conditions d'aseptie,
. La préparation des milieux de culture,
. Les différentes phases de la micropropagation :

     1° Phase de mise en culture : préparation des pieds-mères, sélection et préparation des explants, techniques de désinfection, techniques de prélèvement et/ou découpage des explants
     2° Phase de multiplication
     3° Phase d'allongement des plantules
     4° Phase d'enracinement
     5° L'acclimatation des plantes

Le programme des TP peut-être adapté en fonction des mesures sanitaires prises dans le cadre de la pandémie COVID19, notamment dans le cadre des précautions particulières à prendre pour les cours pratiques.
Learning outcomes of the learning unit :
Les compétences/capacités du Référentiel (RC342) visées sont :

  • 1.a) Rechercher, consulter, analyser, échanger et transmettre des informations techniques ou scientifiques.

  • 2.b) Développer un esprit critique.

  • 2.c) S'adapter aux évolutions technologiques, économiques et sociétales.

  • 4.b) Mettre en application les techniques de mesurages, échantillonnages, analyses, identifications, et autres démarches nécessaires aux objectifs de la recherche appliquée.

  • 4.c) S'approprier rapidement les données scientifiques et techniques associées au projet.

  • 5.a) Appliquer les principes des sciences à tous les domaines de l'agronomie.

  • 6.a) Maîtriser les techniques et les outils de production.

  • 6.b) Veiller à la qualité de la production et des produits.

  • 6.c) Mettre en œuvre de nouvelles technologies de production.


A l'issue du cours théorique, 'étudiant devra être capable de :

  • Expliquer les fondements biologiques de la culture in vitro. (5.a)

  • Décrire la composition générale d'un milieu nutritif et justifier le rôle de ses composants. (5.a, 6.a)

  • Remplir une fiche de milieu de culture de manière précise. (6.a)

  • Justifier l'emploi des régulateurs de croissance en fonction de l'objectif poursuivi (multiplication, enracinement, etc.). (5.a, 6.a)

  • Décrire les différentes étapes d'une culture in vitro en fonction de la méthode utilisée. (6.a)

  • Discuter de l'assainissement des clones par culture de méristèmes et de l'utilisation éventuelle de méthodes complémentaires. (2.b, 6.b)

  • Discuter des risques de production de variants en fonction des techniques de multiplication employées. (2.b, 6.b)

  • Utiliser les concepts théoriques pour proposer des solutions afin de résoudre des problèmes fréquemment rencontrés lors d'une culture (contamination, vitrification, etc.). (2.b, 5.a)

  • Comparer de manière critique les méthodes de multiplication in vitro et conventionnelles. (2.b)


Au terme du module de travaux pratiques, l'étudiant doit être capable de :

  • S'inscrire dans une démarche scientifique rigoureuse. (4.b, 4.c)

  • Manipuler les plantes ou explants en conditions d'asepsie dans un contexte de micropropagation. (4.b, 6.a)

  • Préparer les solutions nécessaires au milieu de culture, préparer un milieu de culture, en corriger le pH et le distribuer dans les contenants appropriés, en respectant scrupuleusement le mode opératoire. (4.b, 6.a)

  • Effectuer ses observations et relever les résultats avec précision. (4.b, 4.c)

  • Discuter ses résultats et observations en les confrontant aux notions théoriques. (2.b, 4.c)

  • Rédiger un rapport de laboratoire structuré (Objectif(s), Matériel et Méthodes, Résultats, Discussion) en utilisant un langage scientifique approprié. (1.a)

Prerequisite knowledge and skills :
Pré-requis recommandés :

  • Botanique
  • Biologie appliquée VI : Microbiologie
  • Sciences appliquées à l'agronomie I : chimie appliquée à l'agronomie
Co-requis :

  • Sciences appliquées III - Microbiologie
  • Sciences appliquées I - Chimie appliquée
 
Planned learning activities and teaching methods :
Cours ex-cathédra et un travail par groupe de 2 étudiants (en 2TGHP) pour le cours théorique

Travaux pratiques en laboratoire pour la partie TP

Syllabus, livre de référence

Tableau, ordinateur+projecteur, vidéo
Mode of delivery (face to face, distance learning, hybrid learning) :
Présentiel
TP en présentiel
Recommended or required readings :
Pour la partie travaux pratiques de laboratoire, les programmes d'activités, les modes opératoires et autres ressources se trouvent sur la plateforme Moodle dans le cours "Culture in vitro - travaux pratiques"
Assessment methods and criteria :
Evaluation du cours théorique : 50% de la cote "culture in vitro" - examen écrit (examen écrit 35%, travail sous forme de document écrit et exposé oral 15%)


Evaluation des travaux pratiques : 50% de la cote "culture in vitro" :

  • Evaluation de la méthode de travail en conditions aseptiques : 25% de la cote d'évaluation des TP : sur base de l'observation des méthodes  de travail lors de la dernière séance de travaux pratiques
  • Rapport de travaux pratiques : 75% de l'évaluation des TP (s'approprier la démarche et le langage scientifique - présenter un rapport structuré).  Les rapports sont présentés en version imprimée et déposés le jour de l'examen théorique
Attention, une cote de 10/20 pour chacune des deux parties du cours (Théorie d'une part et TP d'autre part) doit être obtenue, sans quoi la valeur la plus basse est retenue pour l'évaluation de l'activité d'apprentissage.
Work placement(s) :
Organizational remarks :
Le programme des travaux pratiques, le matériel à prévoir, les échéances de remise des rapports, et diverses ressources se trouvent dans le cours en ligne "Culture in vitro - Travaux pratiques" sur la plateforme Moodle.
La participation aux travaux pratiques est obligatoire, les absences non justifiées sont sanctionnées.
Les étudiants sont priés de se présenter au laboratoire avec le matériel de base nécessaire pour tout travail au laboratoire : Le mode opératoire prévu pour la séance de TP, un tablier de laboratoire propre, masque en tissu, un marqueur indélébile noir, des alumettes ou un briquet.
Contacts :
emilie.duchesne@hech.be